- Información
- Investigación
- Oferta científica
- Oferta tecnológica
- Unidades asociadas
- Utilidades IQFR


Para ampliar hacer "click" sobre cada foto
Estructura, Energía y Reactividad Química
Química Física Biológica
Sistemas de baja dimensionalidad, superficies y materia condensada
Grupo de análisis de superficies y Mössbauer
Grupo de Cristalografía Macromolecular y Biología Estructural
Grupo de Electroquímica
Grupo de Estructura, dinámica e interacciones de Proteínas por RMN
Grupo de Láseres, Nanoestructuras y Procesado de Materiales (LANAMAP)
Grupo de Materiales Láser e nteracciones
Grupo de Química Física Teórica
Grupo de Resonancia Ciclotrónica de Iones
Grupo de RMN de Ácidos Nucleicos
Grupo de Termoquímica y Termofísica
Caracterización espectroscópica de sólidos en volumen y superficie.Estudios de textura y energéticos.
Electroquímica.
Espectroscopía y tecnología laser.
Espectroscopía de fluorescencia/fosforescencia y polarización.
Estudios de cromatografía de gases normal e inversa.
Estructura de sólidos cristalinos, incluidas macromoléculas.
Estructura, termodinámica y dinámica molecular de macromoléculas y sistemas biológicos.
Interacciones moleculares en fase gaseosa y en disolución.
Mecánica Estadística de sistemas desordenados.
Optica no lineal.
Reactividad y estabilidad química y fotoquímica.
Sondas moleculares luminiscentes para proteínas y bicapas.
Termodinámica de sistemas en disolución, fase gas, estado sólido e interfases gas/sólido y líquido/sólido.
Termodinámica y cinética de reacciones de iones y radicales con moléculas en fase gaseosa.
Cromatografía líquida y en fase gas.
Datación de 14C.
Difracción de Rayos X
Electroforesis.
Espectrometría de masas.
Espectrómetro de resonancia ciclotrónica de iones con transformada de Fourier (FTICR).
Espectroscopías FTIR, VIS-UV, UUV, Mössbauer, Auger, XPS.
Espectroscopía de fluorescencia con resolución temporal de picosegundos.
Fotogoniodifusómetro de ángulo bajo.
Haces moleculares pulsados.
Láseres de excímero, colorante, sólido, contínuos, pulsados.
Microcalorímetros de disolución, reacción, valoración isoterma (ITC) y diferencial de barrido (DSC).
Microcalorimetría y volumetría de adsorción.
Reactor para síntesis de fulerenos.
Secuenciador de péptidos.
Servicio de computación HIDRA.
Sintetizador de péptidos.
Sistema de seguimiento de cinéticas rápidas (Stopped-flow y Spectrascan).
Sistema de valoración ácido-base (pKa, pH-stato, Karl-Fisher).
Técnicas de generación de UUV.
Voltametría.
Caracterización de
sustancias fluorescentes y fosforescentes
Carbohydrate microarrays platform
Cromatografía
Cristalografía de proteínas
Interacción Láser-Materiales
Macromoléculas biológicas
Resonancia ciclotrónica
Procesado de materiales y fabricación de nanoestructuras por láser
RMN de Alto Campo
Termoquímica

Una película de cobalto de dos átomos de grosor crecida en rutenio tiene una dirección de imanación perpendicular al plano de la película. Mediante microscopía electrónica de baja energía polarizada en espín se puede observar la imanación localmente y ver los cambios producidos en los dominios magnéticos producidos por agentes externos. Hemos descubierto que cuando se expone a pequeñas cantidades de hidrógeno, los dominios magnéticos se rompen en dominios más pequeños y finalmente la dirección de la imanación se orienta dentro del plano. Hemos podido explicar por medio de cálculos teóricos que el origen del efecto son cambios en la estructura electrónica de los átomos de cobalto enlazados directamente con los átomos de hidrógeno.
Este efecto se podría emplear para fabricar sensores magnéticos para la detección de gases. Asimismo, las cantidades de hidrógeno a las que se expone la película son extremadamente bajas: una presión de hidrógeno un billón de veces inferior a la presión atmosférica es suficiente para producir el efecto en unos minutos. Esto, por último, indica el riesgo que la contaminación con hidrógeno, muy frecuente en sistemas experimentales de vacío, puede suponer en experimentos para determinar la dirección de imanación.


El grupo de investigación dirigido por D. José Miguel Mancheño del IQFR (CSIC), en colaboración con investigadores de seis grupos científicos, ha analizado a alta resolución las bases estructurales del modo de unión de azúcares por el módulo lectina de tipo b-trébol de la proteína fúngica LSLa (LSL-150). Los resultados revelan un papel esencial de ciertas moléculas de solvente en las interacciones azúcar:proteína, pudiendo considerarse a éstas como una extensión funcional adicional de la propia proteína. Por otro lado, se ha demostrado que LSL-150 funciona in vitro como una excelente etiqueta de fusión, lo que ha permitido desarrollar aplicaciones biotecnológicas basadas en esta proteína.




